取材的基本要求和注意事項敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養成功，取材時應盡量在4~6h內能制作成細胞，盡快入箱培養，若不能即時培養，應將組織浸泡于培養液內，于4℃存放。若組織塊較大，應在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結締組織后，切碎于培養液內4℃存放，但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應加入含10%二甲基亞砜的培養基，按細胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應嚴格無菌所取標本材料應在無菌條件下進行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應將所取組織在含高濃如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。北京原代細胞分離試劑盒產品介紹

選擇原代細胞的原因：長期以來，科學家多依賴永生化的細胞系來進行各種研究，但在過去十年，隨著細胞生物學的發展，細胞培養領域發生了巨大變化，新型的技術和培養試劑讓使用原代細胞作為研究對象成為可能。相比于細胞系，原代細胞更多保留了體內原始組織的生物學特征，如生長和衰老，因此通過原代細胞可建立更好的細胞疾病模型。原代細胞（Primarycells）是指來源組織，經過特定分離方法制備而成的初始細胞。原代細胞離體時間短且不經過永生化過程，其生物學特性未發生很大變化，仍保持原有的遺傳特征，可更好地反映細胞在體內的生長狀態，從而獲得與體內生理功能更接近的數據，很適合用于藥物測試、細胞分化和轉化等實驗研究。南京正規原代細胞分離試劑盒產品介紹原代細胞來源于或是新近死亡的供體，通過機械或酶方法解離獲得。

原代細胞的定義：原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。因此，較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。但實際上，我們通常把靠前代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。原代細胞因為可以模擬機體的功能，主要用于：生物醫藥產業如藥物篩選、藥物代謝和毒理研究。原代細胞對解凍過程非常敏感，因此將小瓶置于37℃水浴鍋中，保持并輕輕旋轉直到內容物剛剛解凍是很重要的。然后應立即從水浴中取出小瓶，并轉移到無菌操作臺。確保您的培養瓶在解凍前已經準備就緒，以便可以立即用于接種細胞，并置于培養箱中，使用cellsystems的原代細胞時，復蘇的時候不建議離心，第二天換個液就可以。

原代細胞培養：組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料，較簡單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘，若懸液量大，可適當延長離心時間，但速度不能太高，延時也不能太長，以避免擠壓或機械損傷細胞，離心沉淀用無鈣、鎂PBS洗兩次，用培養基洗一次后，調整適當細胞濃度后再分瓶培養，若選用懸液中某些細胞，常采用離心后的細胞分層液，因為，經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層，這樣可根據需要收獲目的細胞很適合用于藥物測試、細胞分化和轉化等實驗研究。

原代細胞與細胞系：原代細胞來源于或是新近死亡的供體，通過機械或酶方法解離獲得，其方案根據來源物種（例如人，小鼠）和所涉及的組織類型而變化。通常包含以下步驟：組織切割和切碎，酶解，反復洗滌，研磨和微濾分餾，較后重新懸浮和接種收集的細胞群。對于松散的、被纖維結締包圍的組織，機械均質化可能足以進行解離。如果您的組織來源是外周血，差速離心便可以分離目的細胞。由于與細胞分裂相關的染色體端粒縮短，原代細胞在體外的壽命有限。大約20到60次分裂后，端粒變得太短而無法承受另一個循環，導致細胞分裂停止。這種現象被稱為Hayflick極限。對于具有無限倍增能力的細胞系，必須通過細菌或化學誘導方法的轉化使其永生化。細菌對于細胞的基因編輯引入有效促進增殖的基因（例如SV-40，E6，E7），允許細胞無限的細胞分裂1。同樣地，化學誘導方法（例如電離輻射，氯化鎳，苯并芘）改變原代細胞的基因組成，也可實現無限增殖。將凍存管立即從水浴中拿出，擦干，轉入無菌環境。廣州原代細胞分離試劑盒產品介紹

貼壁細胞多來自部位組織，而懸浮細胞多來自血液系統的細胞。北京原代細胞分離試劑盒產品介紹

懸浮型原代細胞：1）必須保持細胞的懸浮狀態。可以通過增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液，以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。北京原代細胞分離試劑盒產品介紹